澳洲坚果果壳多糖的提取工艺研究

时间:2024-08-30 18:18:01 来源:网友投稿

李雯霏,韩 硕,岑淑敏,樊露双

(桂林理工大学南宁分校,广西 南宁 532100)

澳洲坚果又名昆士兰栗、夏威夷果,为多年生常绿乔木,我国主要分布于广西、云南等亚热带地区[1-2]。研究发现澳洲坚果果壳中含有多糖、黄酮等活性物质,具有抗氧化等功效。但澳洲坚果果壳多被丢弃,造成了资源浪费。多糖具有抗氧化、抗肿瘤、免疫增强、抑菌性、辅助降血糖、乳化、延缓人体衰老等多种生物活性[3-4]。多糖提取常采用溶剂、酶、微波辅助、超声波辅助以及超临界流体抽提等方式[5-11],其中溶剂水提法是最传统的提取方法,操作简单、成本低,不会对活性物质造成伤害,可以最大限度地保留物质本身性质,因此被广泛应用。本研究以澳洲坚果果壳的多糖得率为考核指标,通过正交实验探索多糖的最佳提取条件,旨在为澳洲坚果多元化产品开发提供参考。

1.1 主要材料与试剂

澳洲坚果果壳,葡萄糖标准品(纯度99.5%),石油醚、苯酚等为分析纯。

1.2 主要设备与仪器

UV-1800PC 紫外可见分光光度计,JP-1000 B型高速多功能粉碎机,HG101-2A 型电热鼓风干燥箱。

1.3 实验方法

1.3.1 原料预处理

将澳洲坚果果壳洗净,放入电热鼓风干燥箱中,60℃下烘2h。取出冷却至室温,用粉碎机粉碎成干细粉末,过0.25mm筛。将得到的细粉加入烧杯中,倒入8 倍量的石油醚,用玻璃棒搅拌数次,使其均匀反应,于通风橱中静置沉降5~6h。小心倒出上层石油醚,待烧杯内的果壳粉表面的石油醚挥发后,在通风橱内挥干样品,得到脱脂后的澳洲坚果果壳粉。

1.3.2 葡萄糖标准曲线的绘制

采用苯酚-硫酸法[12]进行标准曲线的测定。配制质量浓度为1.00mg·mL-1的葡萄糖标准溶液,在UV-1800 紫外分光光度计上,测定波长490nm 处的吸光度。以葡萄糖标准溶液的质量浓度为纵坐标,吸光度值为横坐标,绘制标准曲线,计算标准曲线的线性回归方程。

1.3.3 样品多糖的提取及得率计算

水浴锅预热温度设定为70℃,准确称取1.00g脱脂后的澳洲坚果果壳粉于250mL 圆底烧瓶中,加入50mL 纯化水,摇匀,回流、水浴加热3h。冷却至室温,抽滤、浓缩,取滤液,转移至250mL 容量瓶中,用纯化水定容至刻度。用移液管精确吸取2.00mL 定容后的提取液于25mL 比色管中,按照标准曲线的绘制方法测定提取液的吸光度,进行3组平行测定,取平均值。提取率按式(1)进行计算:

式中,C为多糖的质量浓度,mg·mL-1;
N为溶液稀释倍数;
V1为提取液的定容体积,mL;
V2为澳洲坚果果壳粉末的质量,g。

1.3.4 单因素实验

本实验有3 个影响因素,即提取时间、提取温度、提取料液比。采用单因素实验,研究各因素对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响,因素及水平表见表1。

表1 单因素实验及水平表

1.3.5 正交实验

根据单因素实验结果,选择提取时间(A)、提取温度(B)、料液比(C)等3 个因素,采用L9(34)正交表进行实验。

2.1 葡萄糖的标准曲线

采用苯酚-硫酸法测定葡萄糖标准溶液的质量浓度C与吸光度A的关系,所得标准曲线见图1。计算得到的葡萄糖标准曲线的线性回归方程为:C=90.211A-0.8765,相关系数R2=0.9989。

图1 葡萄糖的标准曲线

2.2 提取时间对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响

图2是提取时间对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响。从图2 可知,在2.5~3.0h 范围内,随着提取时间延长,澳洲坚果果壳的多糖提取率逐渐增大,3.0~3.5h 时,多糖提取率先短暂下降之后达最大值4.76%。之后随着提取时间延长,多糖提取率呈下降趋势。出现下降的原因可能是长时间作用导致杂质溶出,或是随时间延长,多糖的分解程度增大。由此选定多糖提取率迅速增加的时间点3.5h、4.0h、4.5h进行正交实验。

图2 提取时间对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响

2.3 提取温度对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响

保持料液比为1∶50(w/v),水浴提取时间为3h,在40~90℃范围内,考察水浴回流提取温度对澳洲坚果果壳多糖提取效果的影响,结果见图3。由图3可知,随着提取温度升高,澳洲坚果果壳的多糖提取率逐渐增大,80~90℃时多糖提取率增长迅速,超过90℃后,温度过高会影响多糖的生物活性,因此选择70℃、80℃、90℃进行正交实验。

图3 提取温度对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响

2.4 提取料液比对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响

保持提取时间为3h,水浴提取温度为70℃,在1∶10~1∶60 的提取料液比范围内,考察提取料液比对澳洲坚果果壳多糖提取效果的影响,结果见图4。由图4可知,随提取料液比增大,澳洲坚果果壳的多糖提取率逐渐增大,但料液比持续增大,多糖提取率逐渐趋于平缓。考虑到固液比的差距过大可能会导致后续实验出现浪费,增加成本,因此选择1∶40、1∶50、1∶60进行正交实验。

图4 提取料液比对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响

2.5 正交实验结果与分析

表2是正交实验结果。由表2可知,极差数据R(B)>R(A)>R(C),说明在3 个影响因素中,提取温度对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响最大,提取时间次之,料液比的影响最小。从正交实验得出的最佳实验条件为:提取时间4h,提取温度90℃,提取料液比1∶60。但从表2 可知,因素C 中,料液比1∶40 和1∶60 的K值差别不大,且料液比的影响小,说明这2个条件的提取效果差别不大。分别按料液比1∶40和1∶60,提取温度90℃,提取时间4h进行平行实验,得到了相同结果。考虑到较低的料液比可以节约成本,因此确定最优的提取工艺参数为4h、90℃、1∶40,此时澳洲坚果果壳多糖的提取率为5.35%。

表2 正交实验结果

本文以澳洲坚果果壳为原料,纯化水为溶剂,采用水浴加热回流的方法提取澳洲坚果果壳中的多糖,用苯酚-硫酸法测定了提取液中的多糖含量。结论如下:

1)单因素实验结果表明,澳洲坚果果壳多糖的提取率随提取时间的延长而提高,4.5h时达到最高。提取温度升高后,澳洲坚果果壳的多糖提取率也相应增加。提高提取料液比,澳洲坚果果壳的多糖提取率也逐渐提高。

2)正交实验结果表明,多糖的提取过程中,提取温度对澳洲坚果果壳多糖提取率的影响最大,提取时间次之,料液比的影响最小。最优的提取工艺参数为:提取时间4h,提取温度90℃,料液比1∶40。此时澳洲坚果果壳多糖的提取率达5.35%。

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